Comportamiento in vitro del crecimiento miceliar de Amanita rubescens bajo diferentes niveles de pH y medios de cultivo.
Barra lateral del artículo
Contenido principal del artículo
Resumen
Se estableció cultivos bajo condiciones in vitro para estudiar el comportamiento de 4 cepas de la especie ectomicorrícica comestible Amanita rubescens, procedentes de 2 regiones de Chile. Se evaluó el efecto de los medios nutritivos PDA (Extracto de Papa, Dextrosa, Agar), MMN (Medio Melin- Norkrans) y BAF (Biotina Aneurina ácido Fólico), en cinco niveles de pH (4,8; 5,3; 5,8; 6,3 y 6,8), sobre las variables crecimiento radial (CR), velocidad media de crecimiento (VMC) y biomasa seca (B). La biomasa varía a nivel de cepas. Los medios con mejores rendimientos en CR y VMC fueron principalmente MMN y BAF a nivel de cepa y especie. Para la variable B fueron los medios BAF y PDA. La cepa IF1008002 fue la que produjo la mayor biomasa seca (B), en tanto que las cepas obtenidas de la región de Los Lagos obtuvieron un mayor rendimiento en B bajo el medio BAF, mientras que las procedentes de la región de Los Ríos lo obtuvieron en medio PDA. Comparaciones entre valores promedios del CD, VCM y B, muestran correlaciones que fluctúan entre medias y altas para las variables estudiadas.
Referencias
Ávila, H. (1988). Aislamiento, caracterización y confirmación de micelios en cuatro especies de Amanita( Agaricales)de Mexico. Tésis para optar al título de Biólogo. UNAM, Facultad de Ciencias (Biología). México.180p.
Began, T. (1988). The genus Amanita in Southern Illinois including cultural characters and a detailed study of volval anatomy in section Lepidella. Thesis for the Master of Arts.Department of Botany. Graduate school Southern Illinois University,Carbondale. V+127 pp.
Blanco, A.; Fajardo, J.; Verde A.; Rodríguez, C. & Navarro S. 2007. Amanitas de Albacete. Cuaderno de la Sociedad Micológica de Albacete n°5. Sociedad Micológica de Albacete (ed.) 22 p.
Bonfante, P. & Anca, I. (2009). Plants, mycorrhizal fungi, and bacteria: a network of interactions. Annu. Rev. Microbiol. 63, 363–383. https://doi.org/10.1146/annurev. micro.091208.073504
Brundrett M., Bougher, N., Dell, B., Grove, T. & Malajczuk, N. (1996). Working with Mycorrhizas in Forestry and Agriculture. AClAR Monograph 32. 374 + x p.
Brundrett, M. y Cairney, J. (2002). Ectomycorrhizas in plant communities. In: Sivasithamparam, K., Dixon, K.W. & Barret, R.L. (Eds). Microorganisms in plant conservation and biodiversity. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands. Pp: 105–150. https://doi.org/10.1007/0-306-48099-9_5
Cai, Q.; Codjia,J.E.; Buyck,B.; Cui,Y.; Ryberg,M.; Yorou, N.& Yang,Z. 2024. The evolutionof ectomycorrhizal simbiosis and host-plant switches are the main drivers for diversification of Amanitaceae (Agaricales, Basidiomycota). BMC Biology, 22:230, 1-16. https://doi.org/10.1186/s12915-024-02031-8
Chung, P. (2020). Captura, aislación y evaluación del crecimiento de material fúngico de la región de Ñuble para su incorporación al banco de hongos comestibles del Instituto Forestal. Ciencia & Investigación Forestal, 26(3): 65-92. https://doi.org/10.52904/0718-4646.2020.538
Chung, P. (2021). Influencia de diferentes medios de cultivo y niveles de pH en el crecimiento in vitro de 6 cepas del género Suillus. Ciencia & Investigación Forestal, 27(3): 17–33. https://doi.org/10.52904/0718-4646.2021.555
Cui, YY, Cai, Q., Tang, LP, Liu, JW, Yang, ZL (2018). La familia Amanitaceae : filogenia molecular, taxonomía de rango superior y las especies en China. Fungal Divers. 91, 5–230. doi: 10.1007/s11557-019-01506-1
Dahlberg, A. & Stenlid, J. (1995). Spatio-temporal patterns in ectomycorrhizal populations. Canadian Journal of Botany, N°73. Pp:1222-1230. https://doi.org/10.1139/b95-382
Daza, A., Manjón, J., Aguilar, A., Bernedo, M., Camacho, M., Romero, L. & Santamaría, C. (2005). Crecimiento in vitro y capacidad micorrícica de varios aislamientos de Lactarius deliciosus. IV Congreso Forestal Español. Tomo 4. Pp: 182-188.Zaragoza, España.
Demková, L., Šnirc, M., Jančo, I., Harangozo, Ľ., Hauptvogl, M., Bobuľská, L., Kunca, V., & Árvay, J. (2025). Blusher mushroom (Amanita rubescens Pers.): A Study of Mercury Content in Substrate and Mushroom Samples from Slovakia with Respect to Locality and Developmental Stages. Biological trace element research, 203(3), 1721–1733. https://doi.org/10.1007/s12011-024-04280-8
Dickie, I.; Koide, R. & Stevens, C. (1998). Tissue density and growth response of ectomycorrhizal fungi to nitrogen source and concentration. Mycorrhiza 8:145-148.
Garrido N & Bresinsky, A. (1985) Amanita merxmuelleri (Agaricales), eine neue Art aus Nothofagus-Waldern Chiles. Botanische Jahrbücher Systematik 107: 521-540.
Gestión Ambiental de Navarra (2011). Micología Forestal en Navarra. Proyecto MICOSYLVA. Gestión Ambiental de Navarra (edt.). MICOSYLVA – SUDOE Interreg IV B- Gestión Ambiental viveros y Repoblaciones de Navarra S.A.- Gobierno de Navarra, España 137 p.
Gonzalez V, Arenal F, Platas G, Esteve-Raventos F, Pelaez F. (2002). Molecular typing of Spanish species of Amanita by restriction analysis of ITS region of the DNA. Mycol. Res. 106(8): 903–910.
Grünert, H.; Grünert, R.; VV.AA. (1984). Guías de Naturaleza Blume: Setas (t. original:"Pilze"). Barcelona: Blume. p. 22. ISBN 84-87535-11-9.
Hintikka, V. & Niemi, K.(1990). Aseptic culture of slowly growing mycorrhical Russula and Cortinarius specie. Karstenia, Volume 39 (1999), Issue 2, pages 39-41. https://doi.org/10.29203/ka.1999.336
Honrubia, M., Torres, P., Díaz, G. & Cano, A. (1992). Manual para micorrizar plantas en viveros forestales. Madrid. Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación.
Hung, L. & Trappe, J. (1983). Growth variation between and within species of ectomycorrhizal fungi in response to pH in vitro. Mycologia, N°75. Pp: 234-241. https://doi.org/10.2307/3792807
Iotti, M., Piattoni, F. & Zambonelli, A. (2012). Techniques for Host plant Inoculation with truffles and other edible ectomycorrhizal mushrooms. En: Zambonelli, A. & Bonito, G.M. (Eds). Edible Ectomycorrhizal Mushrooms, Soil Biology, N°34. Springer-Verlag. Berlin Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-642-33823-6_9
Ipinza, R. & Serrano, M. (1982). Micorrización artificial sobre pino insigne en la Estación Experimental Pantanillo - Las Brisas (VII Región). Ciencias Forestales 2(2): 77-93.
Jong, SC & Birmingham,JM (1992). Medicinal Benefits of the Mushroom Ganoderma. Advances in Applied Microbiology. vol.37, pp:101-134. https://doi.org/10.1016/S0065-2164(08)70253-3.
Koide, R. & Stevens, C. (1998). Tissue density and growth response of ectomycorrhizal fungi to nitrogen source and concentration. Mycorrhiza. 8:145-148. https://doi.org/10.1007/s005720050227
Lan, H., Gorfer, M., Otgonsuren, B., & Godbold, D. L. (2025). Growth Characteristics and Freezing Tolerance of Ectomycorrhizal and Saprotrophic Fungi: Responses to Normal and Freezing Temperatures. Forests, 16(2), 191. https://doi.org/10.3390/f16020191
Marx, D.H. (1969). The influence of ectotrophic fungi on the resistance of pine roots to pathogenic infections. I. Antagonism of mycorrhizal fungi to root pathogenic fungi and soil bacteria. Phytopathology, N°59. Pp: 153-163.
Molina, R. & Palmer, J. (1982). Isolation, maintenance and pure culture manipulation of ectomycorrhizal fungi. En: Schenck, N.C. (Ed). Methods and Principles of Mycorrhizal Research. American Phytopathological Soc. St. Paul.
Montgomery, D. (1984). Design and Analysis of Experiments. John Wiley & Sons. New York. 649 p.
Moser, M. (1960). Die Gattung Phlegmacium. Die Pilze Mitteleupora´s 4. J. Bad Heilbrunn
Niazi, A.; Iqbal, S. & Khalid, A. (2009). Ectomycorrhizae between Amanita rubescens and Himalayan spruce (Picea smithiana) from Pakistan. Mycotaxon, 107(8): 73-80. https://doi.org/10.5248/107.73
Odenthal, K.; Seeger, R.; Braatz, R.; Petzinger, E.; Moshaf, H. & Schmitz-Dräger, C. (1982). Damage in vitro to various organs and tissues by rubescenslysin from the edible mushroom Amanita rubescens. Toxicon: official journal of the International Society on Toxinology, 20(4), 765–781. https://doi.org/10.1016/0041-0101(82)90124-6
Olaiza, J.; Santamaría, O. & Diez, J. (2023). In Vitro growth on nine edible ectomycorrhizal fungi under a range of pH conditions. Technical Note. Bioagro 35(2): 159-166.
Ortega, (2012). Análisis de factores influyentes en la gestión del recurso micológico. Tesis Doctoral. Universidad de Valladolid, Escuela Universitaria de Ingeniería Agraria de Soria, Departamento de Producción Vegetal y Recursos Forestales. 108 p.
Quintero-Corrales, C. A., Vega, M., Ramírez-Terrazo, A., Águila, B., & Garibay-Orijel, R. (2024). Downfall of an empire: Unmasking the hidden diversity and distribution of the Amanita rubescens species complex. Mycologia, 116(5), 642–649. https://doi.org/10.1080/00275514.2024.2355276
Salazar V. (2016). Amanita diemii Singer y Amanita merxmellueri Bresinsky & Garrido (Agaricales, Basidiomycota), las amanitas comestibles de Chile. Boletín Micológico, 31(1). https://doi.org/10.22370/bolmicol.2016.31.1.420
Salazar, V. (2020). Guía de Campo. Hongos silvestres comestibles nativos de Chile. ISBN: 978-956-404-532-0. Santiago, Chile.111p.
Sánchez, C. (2017). Bioactives from Mushroom and Their Application. In: Puri, M. (eds) Food Bioactives. Springer, Cham. https://doi.org/10.1007/978-3-319-51639-4_2
Santiago-Martínez, M. (1992). Pruebas de Crecimiento, síntesis in vitro y caracterización de 10 cepas de hongos ectomicorrizógenos. Tesis, grado de Maestra en Ciencia (Biología), UNAM, Facultad de Ciencias, División de estudios de Posgrado. México. 127 p.
Santiago–Martínez, G.& Galindo–Flores, G. (2003). El manejo de los hongos ectomicorrizógenos en vivero y campo. In Avances en el estudio de la micorriza en el estado de Tlaxcala, México, A. Estrada–Torres y M. G. Santiago–Martínez (eds.). Universidad Autónoma de Tlaxcala, Tlaxcala. p. 56–67.
Santiago-Martínez, G., Varela, L., Estrada-Torres, A. & Cuaxilo, V. (1995). Efecto de seis medios de cultivo sobre el crecimiento de tres cepas de Pisolithus tinctorius. Revista Mexicana de Micología, N°11. Pp: 57-68. https://dx.doi.org/10.33885/sf.1995.3.829
Sianard, F., Pangou, S. & Mountanda, A. (2010). Influencia del pH el en desarrollo in vitro de cinco especies de hongos ectomicorrícicos. Centro Agrícola, 37(1): 23-28
Slankis, V. (1973). Hormonal relationships in mycorrhizal development. En: Marks, G.C. & Kozlowski, T.T. Ectomycorrhizae: Their Ecology and Physiology. Academic Press. New York. Pp: 231-298.
Torres, P. & Honrubia, M. (1991). Dinámica de crecimiento y caracterización de algunos hongos ectomicorrícicos en cultivo. Cryptogamie (Mycologie), 12: 183192.
Trappe, J. (1977). Selection of fungi for ectomycorrhizal inoculation in nurseries. Ann Rev Phytolaphol., N°15. Pp: 203–222. https://doi.org/10.1146/annurev.py.15.090177.001223
Tulloss, R.E. (2005). Amanita—distribution in the Americas with comparison to eastern andsouthern Asia and notes on spore charactervariation with latitude and ecology. Mycotaxon 93: 189-231
Valenzuela, E. (2003). Hongos comestibles silvestres colectados en la X Región de Chile. Boletín Micológico, vol. 18. Pp:1-14. https://doi.org/10.22370/bolmicol.2003.18.0.374
Valenzuela, E.; Moreno, G.; Garnica, S. & Ramirez, C. (1998). Micosociología en bosques nativos de Nothofagus y plantaciones de Pinus radiata en la X Región de Chile: diversidad y rol ecológico. Revista Chilena de Historia Natural 71: 133-146.
Valenzuela, E.; Ramirez, C.; Moreno, G.; Polette, M.; Garnica, S.; Peredo, H. & Grinbergs, J. (1996). Agaricales más comunes recolectados en el Campus Isla Teja de la Universidad Austral de Chile. Bosque, 17(1): 51-63.
Valenzuela, E.; Moreno, G.; Garnica, S; Godoy,R. & Ramirez, C. (1999).Mycosociology in native forests of Nothofagus of the X region of Chile, diversity and ecological role. Mycotaxon.Vol. 73:217-226.
Vázquez-García, A., Santiago-Martínez, G. & Estrada-Torres, A. (2002). Influencia del pH en el crecimiento de quince cepas de hongos ectomicorrizógenos. Anales del Instituto de Biología. Serie Botánica, N°73. Pp: 1-15.
Van der Linde, S., Suz, L. M., Orme, C. D. L., Cox, F., Andreae, H., Asi, E., Atkinson, B., Benham, S., Carroll, C., Cools, N., De Vos, B., Dietrich, H. P., Eichhorn, J., Gehrmann, J., Grebenc, T., Gweon, H. S., Hansen, K., Jacob, F., Kristöfel, F., Lech, P., Bidartondo, M. I. (2018). Environment and host as large-scale controls of ectomycorrhizal fungi. Nature, 558(7709), 243–248. https://doi.org/10.1038/s41586-018-0189-9
Zhang, P., Tang, L. P., Cai, Q., & Xu, J. P. (2015). A review on the diversity, phylogeography and population genetics of Amanita mushrooms. Mycology, 6(2), 86–93. https://doi.org/10.1080/21501203.2015.1042536
Zhou, H., Guo, M., Zhuo, L., Yan, H., Sui, X., Gao, Y., & Hou, C. (2023). Diversity and taxonomy of the genus Amanita (Amanitaceae, Agaricales) in the Yanshan Mountains, Northern China. Frontiers in plant science, 14, 1226794. https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1226794
Descargas
Los trabajos publicados en Ciencia & Investigación Forestal se rigen por la licencia Creative Commons Atribución 4.0 Internacional (CC BY 4.0).
En lo esencial esta licencia involucra que los autores conservan sus derechos de autor, y que los lectores puedan de forma gratuita descargar, almacenar, copiar y distribuir la versión final aprobada y publicada del trabajo, siempre y cuando se realice sin fines comerciales y se cite la fuente y autoría de la obra.